A genomszerkesztés svájci bicskája: a CRISPR/Cas9 rendszer
A francia Emmanuelle Charpentier és az amerikai Jennifer A. Doudna fele-fele arányban megosztva kapták a 2020. évi kémiai Nobel-díjat, melyet december 7-én adtak át. A Nobel-bizottság indoklása szerint a genomszerkesztés területén végzett úttörő munkájukért nyerték el az elismerést. Az ELTE kutatói, Perczel András akadémikus, az MTA Kémiai Tudományok Osztályának elnöke, a szerves kémia professzora és Vellai Tibor genetikus professzor kalauzol minket a genomszerkesztés világában.
Az élővilágban az örökítőanyag univerzális formája a DNS (dezoxiribonukleinsav), amelynek építőkövei a nukleotidok. A nukleotidok négyfélék lehetnek, ezek egymás utáni sorrendje kódolja a genetikai információt. A humán genom (az örökítő anyag összessége egy sejtben) közel 3,1 milliárd nukleotidja 23 kromoszómába rendeződik, minden egyes kromoszóma egyetlen összefüggő DNS molekula. A kromoszómák működési egységei a gének, amelyek végső termékei (nemkódoló RNS-ek és fehérjék) építik fel és működtetik sejtjeinket, valamint határozzák meg öröklődő tulajdonságainkat.
Az örökítőanyag megváltozása a gének és géntermékek szerkezeti és funkcionális megváltozásához vezethet. Már egyetlen nukleotid cseréje is egy aminosav megváltozását eredményezheti a kódolt fehérje szerkezetében, amely végül egy patológiás folyamat (betegség) kialakulásához vezethet. Például a p53 tumorszuppresszor fehérjében – amely feladata, hogy gátolja a sejtosztódását és elősegítse a kóros sejtek elpusztulását – akár egyetlen kulcsfontosságú aminosav megváltozása tumorfejlődést indukálhat. Terápiás megoldást jelenthetne, ha a mutáns p53 gén szerkezetében vissza tudnánk állítani az eredeti nukleotidsorrendet, s ezáltal helyre tudnánk állítani a kódolt fehérje normális aminosavsorrendjét.
De hogyan lehet egyetlen nukleotidot kicserélni egy genomban?
Nukleotidszintű, irányított DNS-változtatásokra az elmúlt évtizedekben nem vagy csak alig volt lehetőség, mivel a vizsgált génekben csak nagyrészt véletlenszerű változásokat tudtak a genetikusok indukálni. Egy mutálódott gén eredeti szerkezetének gyógyászati célú visszaállítására idáig csak nagyon korlátozott lehetőségek álltak a rendelkezésünkre. Ám a Charpentier és Doudna által kifejlesztett CRISPR/Cas9 (clustered regularly interspaced short palindromic repeats/CRISPR-associated nuclease 9 – rövid, fordított ismétlődésekkel elhatárolt szekvenciák genomi régiója/CRISPR-kapcsolt nukleáz 9) genomszerkesztő rendszer arra ad lehetőséget, hogy nukleotid-szinten lehessen a DNS-ben tárolt genetikai információt tetszőleges helyen, nagy hatékonysággal és pontosan módosítani. Ezért lett a CRISPR/Cas9 rendszer a genomszerkesztés precíziós svájci bicskája. A következő évtizedek tudományos fejlődéseit éppen ez a technológia, és az idetartozó alap- és orvosbiológiai kutatások és alkalmazások fogják döntően meghatározni. Úgy is fogalmazhatunk, hogy a CRISPR/Cas9 genomszerkesztő rendszer révén mind a genetika, mind a medicina lehetőségei kozmikus méretűre tágulhatnak. A módszerben rejlő lehetőségek méltán vetekszenek a molekuláris biológia robbanásszerű fejlődését lehetővé tevő PCR (polymerase chain reaction – polimeráz-láncreakció) technológia jelentőségével.
A CRISPR/Cas9 rendszer a baktériumok genomi immunválaszaként fejlődött ki az evolúció során. Leginkább a baktériumokat fertőző és bennük elszaporodó vírusok – az úgynevezett fágok - elleni védekezés fő molekuláris fegyverzete. Amikor egy fág egy baktériumsejtet megfertőz, akkor a vírus bejutó genetikai anyaga átprogramozza a gazdasejt működését, és azt a vírus anyagainak szintézisére készteti. A folyamat eredményeként a gazdasejtben új vírusrészecskék szintetizálódnak, aminek következtében a baktériumsejt jobbára elpusztul. Ám az a baktériumsejt, amelyik túlél egy ilyen fágfertőzést, képessé válik arra, hogy a fertőző vírus genomjának egy részletét a saját genomjába integrálja, és ezáltal „emlékezni tud” a fertőző ágens genetikai identitására. Azt a genomi régiót a DNS-ben, ahová a baktériumsejt az idegen virális genomdarabot elraktározta, CRISPR szakasznak nevezzük. A CRISPR rész tehát a baktérium evolúciós múltjában átélt fágfertőzések genomi lenyomatait őrzi egy-egy vírus genomrészlet formájában (genomszintű immunológiai memória). A baktérium így képes különbséget tenni a „saját” és „idegen” (fertőzésként a gazdasejtbe jutott) DNS szakaszok között. A CRISPR régió tehát rövid, ismétlődésekkel határolt, fágeredetű DNS szakaszok együttese. Egy következő fertőzés során a baktériumsejt először a CRISPR régióról transzkripció (génátírás) révén ún. pre-crispr RNS (pre-crRNS) átiratot készít. A pre-crRNS aztán feldarabolódik, és az így keletkező rövid crispr RNS-ek (crRNS) nagymértékű szekvencia-specificitást mutatnak a támadó fág egy genomi részletével. A baktériumgenom egy másik része a CRISPR-rel szomszédos, ún. Cas régió, amely olyan Cas nukleázokat kódol, amelyek képesek a duplaszálú DNS molekula mindkét szálának szekvencia-specifikus elhasítására. A crRNS segítségével ismeri fel a Cas fehérje az elhasítandó vírus genomot. A crRNS és Cas között a kapcsolatot egy harmadik szereplő, az ún. tracer RNS (tracRNS) teremti meg.
A genomszerkesztéshez használt Cas9 fehérje több mint 1350 aminosavat tartalmaz és hat különböző fehérjedoménből épül fel, amelyek téralkata, önszerveződése és hatékony együttműködése gyors és pontos. A HNH és a RuvC nevű két nukleázdomén óraműpontossággal hasítja ketté a felismert idegen DNS-t.
Ez a molekuláris gépezet olajozottan működik, a molekuláris svájci bicska pontosan hasít.
Érdemes megemlíteni azt, hogy az eukarióta (sejtmagvas) élőlényekben is működik egy olyan genetikai apparátus, amely a baktériális CRISPR/Cas rendszerhez hasonló funkcióval bír. Az eukarióta genomokat (pl. emlős sejteket) szintén fertőzhetik virális patogének, amelyek a sejtmagba jutva beékelődnek egy adott genomi pozícióba. Onnan aztán képesek akár több ezer kópiában is lemásolódni és további genomi pozíciókba beékelődni. Az évmilliók során így alakultak ki a mobilis genetikai elemek (MGE-ek) vagy más néven az „ugráló gének”. Ilyen MGE-eredetű ismétlődő szekvenciák alkotják a humán genom közel felét. Ezek a mozgó DNS-darabok „ugrálásuk” során szinte bármilyen kromoszómarészbe befészkelődhetnek, és ezáltal inszerciós mutációkat hozhatnak létre, amelyek nagyfokú genomi instabilitást okoznak a befogadó DNS-helyeken. Könnyen belátható, hogy az ugráló gének blokkolása kulcsfontosságú az élőlények hosszú távú fennmaradása érdekében. Minden egyes MGE családból egy kópia az ún. piRNS (Piwi-kölcsönható RNS) genomi régióba kerül, ahonnan átíródva egy adott piRNS a Piwi-fehérjéket arra ösztökéli, hogy elhasítsák az adott MGE géncsalád RNS-átiratait (mRNS), ezáltal gátolva azok mozgását. A nem öregedő, korlátlan osztódási potenciállal rendelkező csíravonal- és rákos sejtekben a Piwi-piRNS rendszer hatékonyan gátolja a MGE-ek aktivitását, biztosítva eme sejtek genetikai stabilitását. A bakteriális CRISPR és az eukarióta piRNS genomi régiók tehát egymás funkcionális analógjai. Mindkét rendszer kijelöli az „idegen” eredetű, vírusfertőzéssel bejutott genetikai elemeket, és közvetíti azok gátlását.
Charpentier és Doudna a Cas nukleázok ezen tulajdonságait (szekvenciaspecifikus DNS-hasítás) és a bennük rejlő biotechnológiai potenciált (nukleotidpontosságú genomszerkesztés) ismerték fel elsőként. Később a tracRNS-t és a crRNS-t fuzionáltatták, és egy ún. guide (irányító) RNS-t (gRNS) hoztak létre. Egy mindössze 20 nukleotid hosszúságú gRNS már elegendő ahhoz, hogy akár a 3,1 milliárd nukleotid hosszúságú humán genomban egy specifikus felismerést, majd DNS-vágást tegyen lehetővé. A kettősszálú DNS-vágás azonban sejthalált okozna, ezért azt azonnal javítja a sejt DNS-hibajavító gépezete. Éppen ebben rejlik a felfedezés igazi csodája. A kutató egy adott helyen belehasít a DNS-be, amely azonban ismét összeforr, de közben el lehet a „genomszerkesztést” végezni. Ugyanis a CRISPR/Cas9-cel elhasított szabad DNS-végek összeillesztésére két javítógépezet is rendelkezésre áll a sejten belül, amelyek egymással versengve javítják a DNS-vágást. Egyrészt az NHEJ (non-homologous end joining – nem homológ végek összeragasztása), másrészt a homológ rekombináció (HR) molekuláris apparátusa képes az elvágott DNS szálak „összeragasztására”. Az elhidrolizált észterkötés visszaalakítására van tehát két molekuláris rendszer – mondhatná a szerves kémikus. Az NHEJ egy gyors és hatékony, de nem pontos mechanizmus a szabad DNS-végek összeillesztésére. A javítás során így gyakran képződnek hibák, néhány nukleotid ugyanis vagy kimarad, vagy éppen „feleslegbe” kerül a DNS-javítás helyén.
A DNS molekula irányított, tetszőlegesen kiválasztott nukleotidja mentén történő hasítás óriási lehetőségeket rejt magába. Elvileg bármely organizmus, bármely génjében egy kiválasztott nukleotid mellett megtörténhet a kettősszálú DNS hasítás. A lézerkéspontosságú vágáshoz csupán egyetlen specifikusan megszerkesztett gRNS-re és egy Cas9 nukleázra van szükség. Ha a javítás az NHEJ mechanizmussal történik, akkor viszonylag könnyen lehet mutáns génformákat előállítani. A genetikai analízis számára a CRISPR/Cas9-közvetített irányított mutagenezis óriási lehetőségeket kínál. Ha viszont a javítást a HR-apparátus végzi el, akkor a hasítás helyére tetszőleges DNS szekvenciát lehet beépíteni egy megfelelően kiválasztott homológ (donor) DNS szakasz alkalmazásával. Ebben az esetben persze a Cas9-gRNS mellett a homológ DNS-szakaszt is be kell juttatni a sejtbe. Ilyen módon lehet pl. riportergéneket beékelni egy kópiában endogén szekvenciákba a leolvasási keret fenntartásával. Ezzel bármely gén expressziós mintázata meghatározhatóvá válik, ha a megfelelő pozícióba beszerkesztünk egy riportergént (pl. gfp – zöld fluoreszcens fehérje). De HR-rel le lehet cserélni a „rossz” (mutáns, betegséget okozó) nukleotidokat a laboratóriumban előzetesen megszintetizált „jó” szekvenciákra.
A patológiát okozó DNS-szekvenciák kicserélése „normális” szekvenciákra kiemelt orvosbiológiai jelentőséggel bír, hiszen így lehet egészséges sejtvonalakat és szerveket genetikailag megszerkeszteni, és ezzel a test működését potenciálisan helyreállítani. Laboratóriumi körülmények között állatmodellekben már eredményes kísérletek valósultak meg pl. a cisztás fibrózis, az izomdisztrófia, az amiloidképződés vagy a szürkehályog genomszerkesztéssel történő terápiájára vonatkozóan.
Bár a CRISPR/Cas9 rendszer már ma is lélegzetelállítóan hatékony, de azért még messze nem tökéletes. Számos esetben a rendszer aspecifikus helyen, tehát nem a gRNS által kijelölt pontos cél DNS-szekvenciánál is hasít. Ezért a ma zajló fejlesztések főként ennek kiküszöbölésére irányulnak. Az örökletes genetikai betegségek megszüntetése vélhetőleg olyan pozitív fogadtatásra számíthat, mint amikor a 20. században felfedezett antibiotikumok és vakcinák következtében megszűnt számos tömeges megbetegedés. Miután azonban a nukleotidpontosságú DNS-szerkesztés elvileg már teljesen biztonságos (specifikus) lesz, azután is számos kétely és etikai megfontolás fogja a módszer alkalmazását övezni.
Mert mi lenne a jövőnkkel, ha DNS-ünket szabadon átszabhatnánk?
Hibás gének kijavításával meggyógyíthatjuk ugyan öröklődő betegségeinket, de mit jelenthet ez az ökoszisztémát, a Föld egészét tekintve? Azok a genetikai változtatások, amelyeket például a nem öregedő, tehát korlátlan osztódási potenciállal rendelkező csíravonal sejteken végeznének el, mindörökké velünk maradnának leszármazottainkban, s ezzel korábban sohasem látott módon és mértékben befolyásolnánk a jövőnk alakulását. Bár a módszer lehetőségei korlátlannak tűnnek, de hol van az emberi beavatkozás természetes határa? Valóban szebb lesz ettől a jövőnk? Milyen lesz majd genomszerkesztett világunk az A. Huxley közismert "Szép új világ" című regényében olvasottakhoz képest?
Vellai Tibor az ELTE TTK Genetikai Tanszék , Perczel András pedig az ELTE TTK Szerves Kémiai Tanszék munkatársa.